Potensi terapi berbasis siRNA untuk knockdown HIV-1 conserved region sebagai terapi HIV/AIDS: Tinjauan sistematik
Article Sidebar
Main Article Content
Abstract
Human immunodeficiency virus merupakan patogen yang dapat menyerang sistem imun manusia, sedangkan AIDS (Acquired Immunodeficiency Syndrome) merupakan kondisi imunosupresif karena infeksi HIV. Saat ini, kombinasi ART (Antiretroviral Therapy) adalah terapi andalan HIV. Pengobatan saat ini masih menemui beberapa kendala, sehingga peneliti mencari alternatif lain dalam mengatasi HIV/AIDS. Ada beberapa penelitian yang membahas mengenai terapi HIV/AIDS berbasis siRNA dengan hasil yang bagus. Oleh karena itu, peneliti tertarik melakukan tinjauan sistematik untuk mengetahui secara keseluruhan terapi HIV/AIDS yang memiliki hasil lebih baik dalam mengatasi HIV/AIDS. Tujuan dari penulisan ini adalah untuk mengetahui terapi berbasis siRNA untuk knockdown HIV-1 conserved region sebagai terapi HIV/AIDS dapat menurunkan viral load dan/atau meningkatkan sel CD4+. Artikel diseleksi menggunakan metode PRISMA (Preferred Reporting Items for Systemic Reviews and Meta-Analyses). Artikel ditinjau dengan prinsip kerangka PICOS (Participants, Interventions, Comparisons, Outcomes, and Study design). Pencarian artikel didapatkan dari empat basis data yaitu: PubMed, Science Direct, Nature, dan Springer Link. Outcome yang dinilai adalah penurunan viral load dan/atau peningkatan jumlah sel CD4+ dinilai dengan SYRCLE tools. Penelitian-penelitian yang diinklusi merupakan experimental studies in vivo menggunakan hewan coba tikus dan monyet rhesus dengan karakteristik yang berbeda-beda pada setiap penelitian. Hewan coba diintervensi terapi siRNA untuk knockdown HIV-1 conserved region dengan kontrol negatif (placebo) dan/atau kontrol positif (ARV). Semua penelitian yang diinklusi menunjukkan hasil yang signifikan dengan p-value <0,05 dalam menurunkan viral load dan meningkatkan jumlah sel CD4+.
Article Details
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
References
Mohapatra A, Sahoo D. Review on HIV AIDS. Int J Psychosoc Rehabil. 2019;23(6):521–7. KEMENKES RI. Infodatin HIV AIDS. Kesehatan. 2020;1–8.
Qureshi A, Tantray VG, Kirmani AR, Ahangar AG. A review on current status of antiviral siRNA. Rev Med Virol. 2018;28(4):1–11.
Adesina SK, Akala EO. Nanotechnology Approaches for the Delivery of Exogenous siRNA for HIV Therapy. Mol Pharm. 2015;12(12):4175–87.
Gu J, Yang S, Ho EA. Biodegradable Film for the Targeted Delivery of siRNA-Loaded Nanoparticles to Vaginal Immune Cells. Mol Pharm. 2015;12(8):2889–903.
Charlesworth CT, Deshpande PS, Dever DP, Camarena J, Lemgart VT, Cromer MK, et al. Identification of preexisting adaptive immunity to Cas9 proteins in humans. 2020;25(2):249–54.
Shim MS, Wong S, Kwon YJ. SiRNA as a conventional drug in the clinic? Challenges and current technologies. Drug Discov Today Technol. 2012;9(2):e167–73.
Bajan S, Hutvagner G. RNA-Based Therapeutics: From Antisense Oligonucleotides to miRNAs. Cells.
;9(1):1–27.
Herrera-Carrillo E, Liu YP, Berkhout B. The impact of unprotected T cells in RNAi-based gene therapy for HIV-AIDS. Mol Ther. 2014;22(3):596–606.
Zhou J, Rossi JJ. Therapeutic potential of aptamer-siRNA conjugates for treatment of HIV-1. BioDrugs.
;26(6):393–400.
Sajid MI, Moazzam M, Tiwari RK, Kato S, Cho KY. Overcoming barriers for siRNA therapeutics: From bench to bedside. Pharmaceuticals. 2020;13(10):1–25.
Kaymaz BT, Kosov B. Advances in Therapeutic Approaches Using RNA Interference as a Gene Silencing Tool. Adv Tech Biol Med. 2013;1(2).
Zhou J, Satheesan S, Li H, Weinberg MS, Morris K V., Burnett JC, et al. Cell-specific RNA aptamer against human CCR5 specifically targets HIV-1 susceptible cells and inhibits HIV-1 infectivity. Chem Biol. 2015;22(3):379–90.
Liu X, Liu C, Catapano C V., Peng L, Zhou J, Rocchi P. Structurally flexible triethanolamine-core poly(amidoamine) dendrimers as effective nanovectors to deliver RNAi-based therapeutics. Biotechnol Adv [Internet]. 2014;32(4):844–52. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.biotechadv.2013.08.001
Page MJ, McKenzie JE, Bossuyt PM, Boutron I, Hoffmann TC, Mulrow CD, et al. The PRISMA 2020 statement: An updated guideline for reporting systematic reviews. BMJ. 2021;372.
Hooijmans CR, Rovers MM, De Vries RBM, Leenaars M, Ritskes-Hoitinga M, Langendam MW. SYRCLE’s risk of bias tool for animal studies. BMC Med Res Methodol. 2014;14(1):1–9.
Zhou J, Lazar D, Li H, Xia X, Satheesan S, Charlins P, et al. Receptor-targeted aptamer-siRNA conjugate-directed transcriptional regulation of HIV-1. Theranostics. 2018;8(6):1575–90.
Zhou J, Neff CP, Swiderski P, Li H, Smith DD, Aboellail T, et al. Functional in vivo delivery of multiplexed anti-HIV-1 siRNAs via a chemically synthesized aptamer with a sticky bridge. Mol Ther. 2013;21(1):192–200.
Wheeler LA, Vrbanac V, Trifonova R, Brehm MA, Gilboa-Geffen A, Tanno S, et al. Durable knockdown and protection from HIV transmission in humanized mice treated with gel- formulated CD4 aptamer-siRNA chimeras. Mol Ther. 2013;21(7):1378–89.
Boyapalle S, Xu W, Raulji P, Mohapatra S, Mohapatra SS. A multiple siRNA-based anti-HIV/SHIV Microbicide shows protection in both in vitro and in vivo models. PLoS One. 2015;10(9):1–16.